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哺乳动物细胞蛋白表达FAQ

2023-03-13 阅读(578)

Q1:客户提供质粒的话,需要同时提供质粒的哪些信息?

 

A:客户需要提供以下信息:质粒的载体,目的序列,插入位点。最好可以提供包含目的基因的全载体序列。如果您对质粒的信息非常清楚,可以不做检测。如果不是很清楚,则建议先安排测序。

 

Q2:在哺乳动物系统中,常用的标签有哪些?

 

A:常用标签有Fc、His和Flag标签。添加Fc标签可以提高表达水平。His和Flag标签是小标签,可以用于亲和纯化。

 

Q3:CHO细胞与HEK293细胞有什么区别?

 

A:CHO细胞是中国仓鼠卵巢细胞,是目前表达外源蛋白较多较成功的细胞之一,CHO细胞是使用较广泛的宿主细胞,它可以用来生产重组蛋白重组单克隆抗体。这种细胞有明确的基因组信息,在应对人类致病病毒时展现出合理的安全性。此外,CHO细胞表达系统重要的优势之一是容易获得转基因细胞。然而,由于糖基化模式与人类不尽相同,导致CHO细胞生产的重组蛋白在某种程度上仍然表现出免疫原性。

HEK293细胞,又叫人胚胎肾细胞293,是一个衍生自人胚胎肾细胞的细胞系。是哺乳蛋白表达常用的细胞之一,它的优势有:生长速度快、生长密度高、转染效率高、表达修饰后与人类蛋白的结构更相似。HEK293细胞由于其优秀的转染效率,主要用于瞬时表达。它的缺陷是在生长过程中,粘附强度相对较小,在实验过程中容易流失,从而影响实验结果。

 

Q4:瞬时转染与稳定转染有什么区别?

 

A:用于瞬时转染的质粒与用于稳定转染的质粒不同。瞬时转染的质粒不需要有抗性,而用于稳定转染的质粒必须有抗性,以方便后续的克隆筛选。此外,所用的培养基和实验试剂也不同。瞬时转染的操作比构建稳定细胞系的操作要简单。构建质粒后,通过细胞复苏、转染、细胞培养和蛋白纯化就可以获得目标蛋白。要构建稳定的细胞系,应先将构建的质粒线性化,然后导入到培养的哺乳动物细胞中,并通过一定的转染方法使质粒和细胞融合。然后,可以通过细胞池筛选、单克隆筛选、细胞传代培养等步骤来获得稳定的转染细胞系。稳定细胞系的培养可以长期稳定地生产目标蛋白。

 

瞬时转染

稳定细胞系构建

能够快速生产得到微量至中量的重组蛋白

能够长期稳定生产目的蛋白

实验成本低

得到稳转株之后的生产蛋白成本降低

一个宿主可以带有多个拷贝,表达效率高

能够对基因进行基因插入、基因敲除等编辑操作

 

Q5:细胞转染方法有哪些,技术原理是什么?

 

A:如下表所示

转染方法

技术原理

磷酸钙法

磷酸钙DNA复合物吸附细胞膜被细胞内吞

电穿孔发

高脉冲电压破坏细胞膜电位,DNA通过膜上形成的小孔导入

阳离子脂质体法

带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞

DEAE-右旋糖苷法

带正电的DEAE-右旋糖苷与核酸带负电的磷酸骨架相互作用形成复合物被细胞内吞

病毒介导法

通过侵染宿主细胞将外源基因整合到染色体中

基因枪法

将DNA用显微重金属颗粒沉淀,再用颗粒传递法将包被好的颗粒用弹道置投射入细胞,DNA在胞内逐步释放,表达

 

Q6:如果瞬时表达的表达水平较低,通常如何调整实验方案来达到提高表达水平的目的?

 

A:一般来说,蛋白质的表达主要由蛋白自身特性决定。常用的优化方式有密码子的优化,改变信号肽,改变表达载体,克隆策略(如Fc标记),检测细胞裂解液以确定蛋白质是否分泌和表达,改变宿主细胞系,转染模式的优化,细胞培养方案优化,纯化步骤中的缓冲液筛选(沉淀,溶解度),添加蛋白酶抑制剂(如果存在蛋白降解现象)。